Relación heterófilo/linfocito, frecuencia espontánea de eritrocitos micronucleados y prolongaciones nucleares en el ganso nevado (Chen caerulescens): Una propuesta como posible biomonitor de estrés y genotóxicos ambientales

Martha C. Martínez Quintanilla, Olivia Torres Bugarín, José Hugo Martínez Guerrero, Tania Guadalupe Delgado León, José Manuel Salas Pacheco, Martín E. Pereda Solís

Resumen


Existen organismos silvestres que son altamente vulnerables ante estresores antropogénicos y naturales, estos organismos pueden ser de utilidad para evaluar la salud ambiental mediante diferentes indicadores confiables, sencillos, rápidos, económicos para determinar y si es posible reducir estos efectos negativos. En este estudio proponemos al ganso nevado (Chen caerulescens) como posible biomonitor de estrés y genotóxicos ambientales mediante la relación heterófilo/linfocito (H/L), la prueba de micronúcleos (EMN), prolongaciones nucleares en eritrocitos (EPN) y eritrocitos policromáticos (EPC). Durante la temporada de caza (2012-2013) en el humedal de Málaga, Durango, México, colectamos 18 organismos. Los eritrocitos fueron las células más abundantes, de núcleo y morfología elípticos, de tamaño 12.68 ± 0.89 µm. Observamos heterófilos (11.07±1.32 µm), eosinófilos (9.67±1.26 µm), basófilos (5.75 ± 0.78 µm), monocitos (10.49±1.36 µm) y linfocitos (6.53±1.0 µm). No identificamos alteración en las proporciones ni en la morfología de leucocitos, sin embargo, es necesario un mayor número de organismos para establecer los parámetros sanguíneos de base normal para esta especie. La relación h/l fue de 0.41 ± 0.11 este valor es similar a lo reportado para esta y otras especies de aves consideradas como sanas. Establecimos la frecuencia basal de EMN (2.6±1.45), epn (249.2 ± 89.74) y EPC (156.5 ± 50). El ganso nevado es un organismo que se perfila como buen candidato a biomonitor ambiental debido a la frecuencia basal de su relación H/L, EMN, EPN y EPC, pero debe probarse en condiciones estandarizadas y a través de estudios en zonas con y sin contaminación.

Palabras clave


Biomonitor, Chen caerulescens, eritrocitos micronucleados, eritrocitos con prolongaciones nucleares, índice heterófilo linfocito.

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Referencias


Arango, S.S. 2012. Biomarcadores para la evaluación de riesgo en la salud humana. Revista Facultad Nacional Salud Pública 30(1):75-82.

Aschoff, L. 1928. Sistema retículo-endotelial y formación de los pigmentos biliares. Anales de la Real Academia de Medicina y Cirugía de Barcelona 10:81-82.

Álvarez M.I. 2010. Perfil hematológico y hemoparásitos de una población residente del verdugo americano (Lanius ludovicianus, Lannidae: AVES) en Michoacán, México. Tesis de licenciatura en Biología. Facultad de Biología. Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo, México.

Barba C.G. 2006. Identificación de patrones conductuales del ganso nevado (Chen caerulescens) en la subcuenca Sayula y su relación con la calidad del hábitat. Tesis doctoral. Universidad de Guadalajara Centro Universitario de Ciencias Biológicas y Agropecuarias. Zapopan Jalisco, México.

Branton, S.L., J.D. May, B.D. Lott y W.R. Maslin. 1997. Various blood parameters in commercial hens acutely and chronically infected with Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae. Avian Diseases 41: 540-547.

Bellrose, F.C. 1976. Ducks, Geese, & Swans of North America, A Wildlife Management Institute Book: Stackpole Books: Harrisburg, Pennsylvania, 17105.

BirdLife International (en línea). 2015 Species factsheet: Anser caerulescens. Disponible en: (consultado el 5 de diciembre de 2015).

Botello, A.,V., F. Páez-Osuna, L. Méndez-Rodríguez, M. Betancourt-Lozano, S. Álvarez-Borrego, R. Lara-Lara. 2015. Pacífico Mexicano, Contaminación e impactos ambientales: Diagnóstico y tendencias. UAC, UNAM-ICMYL, CIAD-Mazatlán, CIBNOR, CICESE.

Capó M., M. 2007. Principios de Ecotoxicología. Diagnóstico, tratamiento y gestión del medio ambiente. Ed. Tébar, S.L., Madrid, España.

Charles-Smith, L.E., M. E. Rutledge, C.J. Meek, K. Baine, E. Massey, L.N. Ellsaesser, Ch.S. DePerno, Ch.E. Moorman, y L.A. Degernes. 2014. Hematologic parameters and hemoparasites of nonmigratory Canada Geese (Branta canadensis) from Greensboro, North Carolina, USA. Journal of Avian Medicine and Surgery 28(1):16-23 doi: 10.1647/2012-072.

Cirule, D., T. Krama, J. Vrublevska, M.J. Rantala e I. Krams. 2012. A rapid effect of handling on counts of white blood cells in a wintering passerine bird: a more practical measure of stress? Journal of Ornithology 153:161-166.

Clark, P., W. Boardman y S. Raidal. 2009. Atlas of Clinical Avian Hematology. Blackwell Publishing. USA.

Cotter, P.F. 2015. An examination of the utility of heterophillymphocyte ratios in assessing stress of caged hens. Poultry Science 94:512-517.

D’amico, V.L. 2011. Conteos leucocitarios en el playero rojizo (Calidris canutus rufa) en Patagonia, Argentina. Hornero 26(2):73-77.

Davis, A.K., D.L. Maney y J.C. Maerz. 2008. The use of leukocyte profiles to measure stress in vertebrates: a review for ecologists. Functional Ecology 22:760-777.

Dukes, H.H. y M.J. Swenson. 1981. Fisiología de los animales domésticos. Tomo I. Funciones vegetativas. Colección ciencia y técnica. Editorial Aguilar. México.

Fox, G.A., K.A. Grasman y G.D. Campbell. 2007. Health of herring gulls (Larus argentatus) in relation to breeding location in the early 1990s. II. Cellular and histopathological measures. Journal of Toxicology and Environmental Health, Part A, 70:1471-1491.

Gershwin, M., R.S. Beach y L.S. Hurley. 1985. Nutrition and immunity. Academic Press, London.

Genovese, K., H.H. Swaggerty y M.H. Kogut. 2013. The avian heterophil. Developmental & Comparative Immunology 41(3):334-340. doi: 10.1016/j.dci.2013.03.021.

Gómez M., B.C., A.L. Zamora-Pérez, J. Luna-Aguirre, A. González-Rodríguez, M.L. Ramos-Ibarra, O. Torres-Bugarín, C.M. Batista-González y G.M. Zúñiga-González. 2006. Nuclear abnormalities in erythrocytes of parrots (Aratinga canicularis) related to genotoxic damage. Avian Pathology 35(3): 206-210.

Gómez M., B.C., A.L. Zamora Pérez y G.M. Zuñiga González. 2008. Genotoxicity and biomonitoring; Micronuclei in peripheral blood and epithelial cells. Pp 145-182. In: H. Kimura, A. Suzuki (eds.). New Research on DNA Damage. Nova Science Publishers. USA.

Gross, W.B. y H.S. Siegel. 1983. Evaluation of the heterophil/lymphocyte ratio as a measure of stress in chickens. Avian Diseases 27(4):972-979.

Hauptmanova, K., I. Literak y E. Bartova. 2002. Hematology and leukocytozoonosis of Great Tits (Parus major L.) du­ring winter. Acta Veterinaria Brunensis 71:199-204.

Hernández B., M.A., 1998. Caracterización del desarrollo de la bolsa de Fabricio, timo y bazo en aves tipo Leghorn, libres de patógenos específicos (LPE). Tesis de licenciatura en Medicina Veterinaria. Valdivia, Chile.

Heyland, J. (en línea). 2000. Canadian Wildlife Service, Greater Snow Goose. Disponible en: (consultado 2 de noviembre de 2013).

Hintze, J. 2001. NCSS and PASS. Number Cruncher Statistical Systems. Kaysville, Utah.

Hoffman, L., H. Hafner y T. Salathe. 1996. The contribution of colonial waterbirds research to wetland conservation in the Mediterranean region. Colonial Waterbirds 19(1):12-30.

Krusa, M. y V. Bezrukov. 2007. Health status in an Antarctic top predator: micronuclei frequency and white blood cell differentials in the South Polar Skua (Catharacta maccormicki). Polarforschung 77(1):15.

Mallory, M.L., S.A. Robinson, C.E. Hebert y M.R. Forbes. 2010. Seabirds as indicators of aquatic ecosystem conditions: A case for gathering multiple proxies of seabird health. Marine Pollution Bulletin 60:7-12.

Markert, B.A., A.M. Breure y H.G. Zechmeister. 2003. Bioindicators and biomonitors, principles, concepts and Applications. Trace metals and other contaminants in the environment, Vol. 6. Elsevier. USA.

Mathews, C.K. 2015. Deoxyribonucleotide metabolism, mutagenesis and cancer. Nature Reviews Cancer (9):528-39.

Matta-Camacho, N.E., J. Beltrán-Castañeda, Y.P. Gonzalez-Hernández, I. Lotta-Arévalo y N. Salcedo-Porras. 2014. ¿Varía el recuento diferencial de leucocitos en colibríes (Trochilidae) infectados por hemoparásitos? (resumen). Memorias de la Conferencia Interna en Medicina y Aprovechamiento de Fauna Silvestre, Exótica y no Convencional. Asociación de Veterinarios de Vida Silvestre. Colombia 10(2):195-196.

Maxwell, M.H. y G.W. Robertson. 1998. The avian heterophil leukocyte: a review. World’s Poultry Science Journal 54:155-178.

Mayeux, R. 2004. Biomarkers: potential uses and limitations. NeuroRx 1(2):182-188.

Meer E., V.D. y V. Oers K. 2015. Gender and personality differences in response to social stressors in Great Tits (Parus major). Plos One 10(5): e0127984. doi:10.1371/journal.pone.0127984.

Navarro, A. y H. Benítez. 1995. El dominio del aire. Fondo de Cultura Económica. México. D.F.

Needham, L.L., A.M. Calafat y D.B. Barr. 2007. Uses and issues of biomonitoring. International Journal of Hygiene and Environmental Health 210 (3-4):229-238.

Newman M.C. 2010. Fundamentals of Ecotoxicology 3a. ed. CRC Press, Boca Raton, FL. USA.

Ontiveros-García, L.A. 2006. Efecto de las infestaciones causadas por el protozoario Amyloodinium coellatum (Brown, 1931) sobre los parámetros sanguíneos y filamentos branquiales del pargo lutjanero (Lutjanus guttatus) (Steindachneri 1869). Tesis de maestría. Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo-Mazatlán (CIAD-Mazatlán). Mazatlán, Sinaloa, México.

Páez-Osuna, F., C. Osuna-Martínez. 2011. Biomonitores de la contaminación costera con referencia a las costas mexicanas: una revisión sobre los organismos utilizados. Hidrobiológica 21 (3):229-238.

Pérez G., R.A., E. Montes de Oca Herrera, E. Zenteno Galindo y C. Sierra Castillo. 2008. Análisis de los grupos celulares sanguíneos en diferentes especies de aves por el método de Romanowsky. Memoria de Resúmenes del IX Congreso Nacional de Microscopía, León Guanajuato, México.

Peterson R.T. y E.L. Chalif. 2008. Aves de México Guía de campo. Diana. México.

Ramírez-Muñoz, M.P., G. Zúñiga, O. Torres-Bugarín, E. Portilla, D. García-Martínez, A. Ramos, J.M. Cantú y J. Sánchez-Corona. 1999. Evaluation of the micronucleus test in peripheral blood erythrocytes by use of the splenectomized model. Laboratory Animal Science. 49(4):418-420.

Ross-Muñoz, S. 2011. Utilización de biomarcadores para evaluar los efectos de Hg y Pb en aves migratorias del noroeste de México. Tesis de maestría. Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo-Mazatlán (CIAD-Mazatlán). Mazatlán, Sinaloa, México.

Schmid, W. 1975. The micronucleus test. Mutation Research 31(1):9-15.

Serrano-García, L. y R. Montero-Montoya. 2001. Micronuclei and chromatid buds are the result of related genotoxic events. Environmental Molecular Mutagenesis 38:38-45.

Shepherd, G.L. y C.M. Somers. 2012. Adapting the buccal micronucleus cytome assay for use in wild birds: age and sex affect background frequency in pigeons. Environmental and Molecular Mutagenesis 53 (2):136-144.

Spahn, S.A. y T.W. Sherry. 1999. Cadmium and lead exposure associated with reduced growth rates, poorer fledging success of little blue heron chicks (Egretta caerulea) in south Louisiana wetlands. Archives of Environmental Contamination and Toxicology. 37:377-384.

Tataruch, F. y H. Kierdorf. 2003. Mammals as bioindicators. Pp 737-772. In: B.A. Markert, A.M. Breure y H.G. Zechmeister (eds.). Bioindicators and Biomonitors: Principles, Concepts and Applications. Elsevier Science, Amsterdan, Holland.

Torres-Bugarín, O., M.G. Zavala-Cerna, A. Nava, A. Flores-García, M.L. Ramos-Ibarra. 2014. Potential uses, limitations, and basic procedures of micronuclei and nuclear abnormalities in buccal cells. Disease Markers. 2014:1-14. doi:10.1155/2014/956835.

Udroiu, I. 2006. The micronucleus test in piscine erythrocytes. Aquatic Toxicology 79:201-204.

Weiss, D.J. y K.J. Wardrop. 2010. Veterinary Hematology, 6th Edition. Wiley-Blackwell. USA.

Williams, J.I .y D.O. Trainer. 1971. A hematological study of snow blue and Canada geese. Journal of Wildlife Diseases 7:258-264.

Zúñiga G, G.M., O. Torres-Bugarín, M.P. Ramírez-Muñoz, A. Ramos, E. Fanti-Rodríguez, E. Portilla, D. García-Martínez, J.M. Cantú, M.P. Gallegos-Arreola, J. Sánchez Corona. 1996. Spontaneous micronuclei in peripheral blood erythrocytes from 35 mammalian species. Mutation Research 369:123-127.

Zúñiga G., G.M., O. Torres-Bugarín, A. Zamora-Pérez, B.C. Gómez-Meda, M.L. Ramos Ibarra, S. Martínez-González, A. González-Rodríguez, J. Luna-Aguirre, A. Ramos-Mora, D. Ontiveros-Lira, M.P. Gallegos-Arreola. 2001. Diffe­rences in the number of micronucleated erythrocytes among young and adult animals including humans Spontaneous micronuclei in 43 species. Mutation Research 494:161-167.




DOI: http://dx.doi.org/10.28947/hrmo.2017.18.1.268

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